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小鼠尾静脉注射的几点体会

时间:2011-04-21  作者:秩名
论文导读:小鼠尾静脉注射是药理,毒理实验中常用的注射方法,也是医学学生必备的技能之一,本文主要总结了医学本科生小鼠尾静脉注射实验中的几点体会。
关键词:小鼠尾静脉注射,体会
 
在医学研究中,小鼠常常被选为实验对象,进行药理、毒理实验、肿瘤实验及各种急、慢性实验。小鼠目前的给药方式有灌胃给药,腹腔注射,皮下注射,尾静脉注射等 [1] 。尾静脉注射是一项重要的给药方法,由于小鼠尾静脉较细,尾静脉难度大,在学生实验中的广泛应用受到了限制。发表论文。为此,笔者把实践过程中得出了一些经验介绍如下,以供大家交流。发表论文。 1.器材与方法 器材:1ml一次性注射器,棉球,纱布,毛巾或面纱手套 方法简介:将小鼠固定在小鼠固定器中,使其尾巴露出。用手指压迫尾根部的两侧片刻,一手食指从下面托起尾尖部,与拇指捏住并微微转动,使左或右侧的静脉向上,一手持4号或4.5号针头注射器,在距尾尖1/2或1/3处进针。发表论文。一次注射量为0.05~0.1 ml/10 g体重。注射完后拔出针尖,把尾部向注射侧弯曲或以棉球压迫止血[2]。 2.小鼠尾静脉注射的体会 2.1实验开始之时,应注意检查小鼠固定器是否完好,注射针头是否变钝,否则应注意更换,以免由于实验器材的问题造成不必要的困扰,影响实验的进度。 2.2小鼠尾部的血运十分丰富,在其背、腹及左右两侧有数条动静脉伴行的血管丛。其中背、腹各一根的动脉与左右各一根的静脉最为明显。动脉的位置相对较深且管腔相对较小,不容易刺入,因此常常选择两侧的静脉,且两侧的静脉较容易固定,它的直径平均小于 0.6 ±0 .5 mm,但当遇到热水,7 5 %酒精, 或远红外线的烘烤时,尾静脉呈明显扩张, 平均为 0.9 ± 0 .7 mm[3]。 2.3压迫尾根部使血管充盈,此外,使用40' C左右的热水浸泡鼠尾 l 0~2 0 s或使用75% 酒精棉球强檫,软化角质,还可以灯泡靠近鼠尾烤均可以使血管更加充盈、清晰。[4] 局部还可以使用血管扩张药如硝酸甘油[5]。用热水浸泡鼠尾时,注意水温不要太高,以免烫伤鼠尾,甚至引起脱皮。 2.4在实验过程中,注射器中含有少量气泡便可使小鼠出现呼吸急促,四肢抽搐,然后倒地死亡。所以,在进针前应排尽注射器中的空气,以免空气从静脉进入血液循环,形成空气栓塞,造成小鼠的死亡。 2.5进针时,针尖须斜面朝上, 以针头与鼠尾小于15'的夹角穿入小鼠尾部皮下静脉后,再以近乎平行的角度缓慢进针。进入后,针尖稍微上挑,刺入已经充盈的尾静脉内3~5 mm。保持针头刺入点、血管、注射器成一条直线。刺入后肉眼可以看到血管内的针管,先缓注少量药液,若针头前进及推药均通畅,无阻力,且见液体沿静脉走向流动,则说明针头已经准确插入静脉内,表示针头已进入静脉,可继续注入。若推药有阻力甚至针头处出现白隆起、色的皮丘,则表明未刺入血管,应重新向尾巴根部移动注射。 2.6进针推药时,因为小鼠尾静脉的血管壁较薄,应保持针管的相对平稳,以免针尖晃动,戳破血管,造成穿刺的失败。一般推药时速度要缓慢,推药要均匀,其速度不宜过快,以免造成小鼠血容量在短时间内的急剧上升,造成充血性心力衰竭。 2.7注射时还发现有些小鼠的敏感性较高,即使在轻微刺激下,全身肌肉处于紧张状态,尾巴强直,或是小鼠受到刺激后,烦躁不安,尖叫、乱动,致使穿刺不易成功。此时,应稍等片刻,待动物安静后再行穿刺。 2.8穿刺尾静脉时要用一份平和的心态。穿刺成功了,不骄傲,尽量感受穿刺成功时的那种手感,同时总结出自己的一套成功的方法;失败了,不气馁,不浮躁,继续静下心来练习,相信天道酬勤。 2.9抓住一切可能的机会练习尾静脉。如在上实验课时,对完成教学任务的小鼠不要立即处死,可以充分的将其利用,来进行穿刺尾静脉练习。同时,在练习时,最好能两到三人组成一个小组,相互交流经验,相互学习,共同进步。小鼠尾静脉的穿刺是一个熟能生巧的过程。平时多加强练习,定能有所收获。
参考文献
[1]梁月琴,杨波.大鼠、小鼠给药及采血的几点体会[J].山西医科大学学报,2000,31(1):92-93.
[2]徐叔云,卞如濂,陈修.药理实验方法学.第2版[M].北京:人民卫生出版社, 1991:156.
[3]杨春练,方青枝.小.鼠尾静脉作为新护士静脉穿刺训练模[J].医药世界,2005, (5):69-70.
[4]叶明霞,孔利佳,许 迪,等.浅谈大小鼠尾静脉注射之经验体会[J].中华临床医学杂志,2008;9(12):58-59.
[5]蒋兰兰,冯俊涛,罗百灵,等.硝酸甘油干预法对小鼠尾脉穿刺效果影响[J].中国医学工程,2 0 0 4;12 ( 4 ) :9 2 .
 
 
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